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QPix 400 系列微生物克隆筛选系统

QPix 400 系列微生物克隆筛选系统结合了智能成像分析筛选精准自动化挑取,可对更大的菌株库或基因文库进行快速而高效的筛选,以缓解流程瓶颈。通过多种筛选模式、数据追踪和数据库管理,QPix软件可简化对复杂和重复的微生物克隆筛选流程的控制和管理。QPix 400 系列包括了Qpix XE,Qpix 420,Qpix 450,Qpix 460Qpix HT 这五个型号,满足不同用户的配置要求。


QPix 400 系列拥有白光和荧光成像,自动化挑取微生物菌落,实现样品涂布,文库筛选和管理,通量点膜等。在合成生物学,工业微生物改造/筛选,噬菌体展示,蛋白表达,酶定向进化,生物燃料,基因合成和文库构建方面得到广泛应用。


我们的模块化、可扩展系列克隆筛选系统能让任意规模的筛选任务提高其工作流程的准确度和通量,同时仍允许在未来提升至更大的通量。

• 高效挑取克隆,挑取速度达3000个克隆/小时,效率>98%
• 支持多种不同微生物,多种筛选方式识别特定表型克隆
• 涂布模块,实现自动化菌液加样和平板涂布
• 电子数据追踪,适用于妥善记录的数据控制
• 多重灭菌功能,保持无菌状态,防止污染

特点
 
参数
属性
参数
相机(白光系统)
CCD相机, 图像分辨率:22 像素/mm。视野:62 x 46 mm
相机(白光和荧光系统)
CCD相机, 图像分辨率:22 像素/mm。视野:32 x 24 mm
荧光成像(可选)
落射成像,包括 5 种标准荧光通道
克隆筛选参数
可根据大小、间距、圆度和荧光强度选择克隆。基于整个托盘图像进行选择
数据追溯
1 个条形码阅读器(用于记录源板和终板)。追溯孔板在所有应用中的数据。
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应用

●合成生物学
合成生物学目前已广泛应用于医药、工业化学品、食品、农业、生物能源、环保等多个领域。随着对源自重组生物学合成产品需求的增加,劳动密集型、耗时且容易出现人为错误的人工合成生物学工作流程已经不再适用,快速、准确的高通量微生物菌株工程和分子克隆方法变得更受青睐。通过利用QPix400高通量、自动化的工作流程,可以帮助合成生物学家加速研发进程。


●蛋白质进化
蛋白质进化描绘蛋白质形状、功能和组成随时间推移而产生的变化。蛋白质的定向进化经证实是改变和改善大分子活性的一种有效策略,可用于工业、研究和治疗应用。由于具备多个荧光滤光片,QPix 400系统可与各种荧光克隆载体兼容。这使QPix微生物克隆筛选系统能够在研究蛋白质折叠、酶进化和蛋白定位时显示单个克隆的独特信息。这包括寻找转化标记和筛选突变子。


●噬菌体展示

噬菌体展示是一种可实现蛋白质、多肽或DNA与靶蛋白相互作用研究的技术。这种分子工具可使用噬菌体来呈现病毒外壳表面的靶蛋白,同时融合编码病毒外壳内靶蛋白的DNA,从而实现高亲和性结合物的发现。可显示结果的噬菌体可被筛选以用于与肽或蛋白文库高通量结合。QPix微生物克隆筛选系统可在噬菌体展示工作流程中实现自动接种、涂布、划线和挑取。


●单克隆抗体 (mAb)

单克隆抗体(mAb)源于一个独特的亲本细胞,因此仅可结合单个表位。单克隆抗体开发通常指筛选和识别可靶向某一特定抗原表位的特异性抗体以用于疾病诊治,如COVID-19冠状病毒。


●蛋白表达

在基因工程技术中,可以利用大肠或酵母蛋白表达系统进行外源基因的表达。大量克隆的筛选和产物检测需要高通量的方式来提升效率。QPix微生物克隆筛选系统的荧光及多种筛选模式能够帮助减少下游通量。


●工业微生物改造/筛选

聚乳酸、聚酯、透明质酸、胶原蛋白等产品的原材料可以通过微生物发酵的方式获得,而菌株是产能的关键。通过高通量、自动化的筛选方式能够在突变菌株库中高效快速的筛选到目的高产菌株,提高生产产率、提升企业盈利。


●基因合成和文库构建

基因合成和文库构建过程将产生大量载体克隆,不论是为了获得目的基因、还是构建更大的基因文库,高通量筛选手段都能帮助加速这一过程,QPix微生物克隆筛选系统以可靠性和准确度著称,曾在人类基因组计划中被许多测序中心使用。


●生物燃料

随着全球能源问题日益加剧,生物能源为应对能源危机提供了可能。通过筛选或构建产脂微生物系统来利用生物质高效生产生物燃油,不仅能够缓解能源问题,同时对生物质的高效利用也能够减少二氧化碳的排放。QPix微生物克隆筛选系统可自动执行克隆挑取任务(一个费力且易出错的过程),从而有效缩短找到合适候选克隆的时间。

发表文献:
Tom Z. Yuan, Pankaj Garg, Linya Wang, et al. Rapid discovery of diverse neutralizing SARS-CoV-2 antibodies from large-scale synthetic phage libraries. mAbs 14, (2021).
Daniel Evans-Yamamoto, François D Rouleau, et al. Barcode fusion genetics-protein-fragment complementation assay (BFG-PCA): tools and resources that expand the potential for binary protein interaction discovery. Nucleic Acids Research 50, e54 (2022).
Tao Cheng, Lili Wang, et al. Optimizing the downstream MVA pathway using a combination optimization strategy to increase lycopene yield in Escherichia coli. Microbial Cell Factories 21, 121 (2022).
Fabian Stefan Franz Hartmann, Tamara Weiß, et al. Visualizing the pH in Escherichia coli Colonies via the Sensor Protein mCherryEA Allows High-Throughput Screening of Mutant Libraries. mSystems 7, (2022).
Michael Zimmermann, Maria Zimmermann-Kogadeeva, et al. Mapping human microbiome drug metabolism by gut bacteria and their genes. Nature 570, 462–467 (2019).
Sudha Shukal, Xiao Hui Lim et al. Metabolic engineering of Escherichia coli BL21 strain using simplified CRISPR-Cas9 and asymmetric homology arms recombineering. Microbial Cell Factories 21, 19 (2022).
Egon Heuson, Augusto Etchegaray, et al. Screening of Lipopeptide-Producing Strains of Bacillus sp. Using a New Automated and Sensitive Fluorescence Detection Method. Biotechnology 14, (2019).
Yaping Cha, Wen Li, et al. Probing the Synergistic Ratio of P450/CPR To Improve (+)-Nootkatone Production in Saccharomyces cerevisiae. Agricultural and Food Chemistry 70, 815`825 (2022).
Yujie Yuan, Shu Cheng, et al. Efficient exploration of terpenoid biosynthetic gene clusters in filamentous fungi. Nature Catalysis 5, 277-287 (2022).
Peng Zhao,Yasuaki Anami, et al. Enhanced anti-angiogenetic effect of transferrin receptor-mediated delivery of VEGF-trap in a glioblastoma mouse model. mAbs 14, (2022)
 
 
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